Люмінесцентні олігонуклеотидвмісні блок-кополімери як маркери бактерій та клітин на основі телехелатного оліго (N-вінілпіролідону) з кінцевими епоксидним та фторалкільним фрагментами

dc.citation.epage172
dc.citation.issue1
dc.citation.spage166
dc.contributor.affiliationНаціональний університет “Львівська політехніка”
dc.contributor.affiliationLviv Polytechnic National University
dc.contributor.authorВолянюк, К. А.
dc.contributor.authorПаюк, О. Л.
dc.contributor.authorМітіна, Н. Є.
dc.contributor.authorЗаіченко, О. С.
dc.contributor.authorКінаш, Н. І.
dc.contributor.authorVolianiuk, K. A.
dc.contributor.authorPaiuk, O. L.
dc.contributor.authorMitina, N. Ye.
dc.contributor.authorZaichenko, A. S.
dc.contributor.authorKinash, N. I.
dc.coverage.placenameLviv
dc.coverage.placenameLviv
dc.date.accessioned2020-02-28T13:09:33Z
dc.date.available2020-02-28T13:09:33Z
dc.date.created2019-02-28
dc.date.issued2019-02-28
dc.description.abstractЗапропоновано методику мічення бактерій гібридним фторвмісним блок-кополімером з фрагментом олігонуклеотида та детектування методом мас-спектроскопії вторинних іонів. Синтетичні олігомери для створення блок-кополімеру на основі оліго (N-вінілпіролідону) отримано методом радикальної полімеризації. Як ініціюючу Red-Ox систему використано сіль Ce4+ та фторалкільні спирти лінійної будови різної довжини. Структуру олігомерів підтверджено методами ІЧ- та ЯМР-спектроскопії. Досліджено вплив довжини фторалкільного блока на колоїдно-хімічні властивості одержаних олігомерів. Підтверджено можливість мічення бактерій отриманим природно-синтетичним блок-кополімером.
dc.description.abstractA method for labeling bacteria by a hybrid fluorine-containing block-copolymer with a fragment of an oligonucleotide and detection by method of mass spectroscopy of secondary ions is proposed. Synthetic oligomers for creating block-copolymer based on N-vinylpyrrolidone (NVP) were obtained by radical polymerization method. As the Red-Ox initiating system were used the Ce4+ salt and fluoroalkyl alcohols of linear structure of different lengths. The structure of oligomers is confirmed by IR and NMR spectroscopy. The influence of the fluoroalkyl block length on the colloid-chemical properties of the obtained oligomers was studied. The possibility of labeling bacteria via obtained natural-synthetic block-copolymer was confirmed.
dc.format.extent166-172
dc.format.pages7
dc.identifier.citationЛюмінесцентні олігонуклеотидвмісні блок-кополімери як маркери бактерій та клітин на основі телехелатного оліго (N-вінілпіролідону) з кінцевими епоксидним та фторалкільним фрагментами / К. А. Волянюк, О. Л. Паюк, Н. Є. Мітіна, О. С. Заіченко, Н. І. Кінаш // Chemistry, Technology and Application of Substances. — Lviv : Lviv Politechnic Publishing House, 2019. — Том 2. — № 1. — С. 166–172.
dc.identifier.citationenLuminescent oligonucleotide containing block-copolymers as markers of bacteria and cells basedon telechelatic poly (n-vinylpyrrolidone) with the terminal epoxy and fluoroalkyl fragment / K. A. Volianiuk, O. L. Paiuk, N. Ye. Mitina, A. S. Zaichenko, N. I. Kinash // Chemistry, Technology and Application of Substances. — Lviv : Lviv Politechnic Publishing House, 2019. — Vol 2. — No 1. — P. 166–172.
dc.identifier.urihttps://ena.lpnu.ua/handle/ntb/46375
dc.language.isouk
dc.publisherLviv Politechnic Publishing House
dc.relation.ispartofChemistry, Technology and Application of Substances, 1 (2), 2019
dc.relation.references1. Lazcka O., Campo F. J. D., Muñoz F. X., Pathogen detection: A perspective of traditional methods and biosensors, Biosensors and Bioelectronics, 22 (2007) 1205–1217.
dc.relation.references2. Singh, S. Poshtiban, S. Evoy, Recent advances in bacteriophage based biosensors for foodborne pathogen detection, Sensors, 13 (2013) 1763–1786.
dc.relation.references3. Bhardwaj, N., Bhardwaj, S. K., Nayak, M. K., Mehta, J., Kim, K. H., & Deep, A. (2017). Fluorescent nanobiosensors for the targeted detection of foodborne bacteria. TrAC Trends in Analytical Chemistry, 97, 120–135.
dc.relation.references4. Schutt, E. G., Klein, D. H., Mattrey, R. M., & Riess, J. G. (2003). Injectable microbubbles as contrast agents for diagnostic ultrasound imaging: the key role of perfluorochemicals. Angewandte Chemie International Edition, 42(28), 3218–3235.
dc.relation.references5. Mao, Y., Akram, M., Shi, J., Wen, J., Yang, C., Jiang, J., & Tian, Y. (2019). Optical oxygen sensors based on microfibers formed from fluorinated copolymers. Sensors and Actuators B: Chemical, 282, 885–895.
dc.relation.references6. Riess, J. G., & Krafft, M. P. (2006). Fluorocarbon emulsions as in vivo oxygen delivery systems: Background and chemistry. In Blood substitutes (p. 259–275). Academic Press.
dc.relation.references7. Riess, J. G. (2005). Understanding the fundamentals of perfluorocarbons and perfluorocarbon emulsions relevant to in vivo oxygen delivery. Artificial cells, blood substitutes, and biotechnology, 33(1), 47–63.
dc.relation.references8. Lehmler, H. J. (2007). Perfluorocarbon compounds as vehicles for pulmonary drug delivery. Expert opinion on drug delivery, 4(3), 247–262.
dc.relation.references9. Porsch, C., Zhang, Y., Östlund, Å., Damberg, P., Ducani, C., Malmström, E., & Nyström, A. M. (2013). In Vitro Evaluation of Non-Protein Adsorbing Breast Cancer Theranostics Based on 19FPolymer Containing Nanoparticles. Particle & particle systems characterization, 30(4), 381–390.
dc.relation.references10. Xiong, S. D., Li, L., Jiang, J., Tong, L. P., Wu, S., Xu, Z. S., & Chu, P. K. (2010). Cationic fluorine-containing amphiphilic graft copolymers as DNA carriers. Biomaterials, 31(9), 2673–2685.
dc.relation.references11. Wang, M., Liu, H., Li, L., & Cheng, Y. (2014). A fluorinated dendrimer achieves excellent gene transfection efficacy at extremely low nitrogen to phosphorus ratios. Nature communications, 5, 3053.
dc.relation.references12. Liu, G., Fan, W., Li, L., Chu, P. K., Yeung, K. W., Wu, S., & Xu, Z. (2012). Novel anionic fluorine-containing amphiphilic self-assembly polymer micelles for potential application in protein drug carrier. Journal of Fluorine Chemistry, 141, 21–28.
dc.relation.references13. Krafft, M. P., & Riess, J. G. (2009). Chemistry, physical chemistry, and uses of molecular fluorocarbon-hydrocarbon diblocks, triblocks, and related compounds unique “apolar” components for self-assembled colloid and interface engineering. Chemical reviews, 109(5), 1714–1792.
dc.relation.references14. Ameduri, B., & Vitale, A. (2014). Fluorinated Oligomers and Polymers in Photopolymerization. Chemical Reviews, 115, XY.
dc.relation.references15. Кінаш, Н. І., Паюк, О. Л., Долинська, Л. В., Надашкевич, З. Я., & Гевусь, О. І. (2017). Синтез нових функціональних похідних кумінового спирту. Вісник Нац. ун-ту “Львівська політехніка”. Серія: Хімія, технологія речовин та їх застосування, (868), 40–44.
dc.relation.references16. Oliveira, M., Andrade, G., Guerra, M., & Bernardo, F. (2003). Development of a fluorescent in situ hybridization protocol for the rapid detection and enumeration of Listeria monocytogenes in milk. Revista Portuguesa de Ciências Veterinárias, 119–124.
dc.relation.referencesen1. Lazcka O., Campo F. J. D., Muñoz F. X., Pathogen detection: A perspective of traditional methods and biosensors, Biosensors and Bioelectronics, 22 (2007) 1205–1217.
dc.relation.referencesen2. Singh, S. Poshtiban, S. Evoy, Recent advances in bacteriophage based biosensors for foodborne pathogen detection, Sensors, 13 (2013) 1763–1786.
dc.relation.referencesen3. Bhardwaj, N., Bhardwaj, S. K., Nayak, M. K., Mehta, J., Kim, K. H., & Deep, A. (2017). Fluorescent nanobiosensors for the targeted detection of foodborne bacteria. TrAC Trends in Analytical Chemistry, 97, 120–135.
dc.relation.referencesen4. Schutt, E. G., Klein, D. H., Mattrey, R. M., & Riess, J. G. (2003). Injectable microbubbles as contrast agents for diagnostic ultrasound imaging: the key role of perfluorochemicals. Angewandte Chemie International Edition, 42(28), 3218–3235.
dc.relation.referencesen5. Mao, Y., Akram, M., Shi, J., Wen, J., Yang, C., Jiang, J., & Tian, Y. (2019). Optical oxygen sensors based on microfibers formed from fluorinated copolymers. Sensors and Actuators B: Chemical, 282, 885–895.
dc.relation.referencesen6. Riess, J. G., & Krafft, M. P. (2006). Fluorocarbon emulsions as in vivo oxygen delivery systems: Background and chemistry. In Blood substitutes (p. 259–275). Academic Press.
dc.relation.referencesen7. Riess, J. G. (2005). Understanding the fundamentals of perfluorocarbons and perfluorocarbon emulsions relevant to in vivo oxygen delivery. Artificial cells, blood substitutes, and biotechnology, 33(1), 47–63.
dc.relation.referencesen8. Lehmler, H. J. (2007). Perfluorocarbon compounds as vehicles for pulmonary drug delivery. Expert opinion on drug delivery, 4(3), 247–262.
dc.relation.referencesen9. Porsch, C., Zhang, Y., Östlund, Å., Damberg, P., Ducani, C., Malmström, E., & Nyström, A. M. (2013). In Vitro Evaluation of Non-Protein Adsorbing Breast Cancer Theranostics Based on 19FPolymer Containing Nanoparticles. Particle & particle systems characterization, 30(4), 381–390.
dc.relation.referencesen10. Xiong, S. D., Li, L., Jiang, J., Tong, L. P., Wu, S., Xu, Z. S., & Chu, P. K. (2010). Cationic fluorine-containing amphiphilic graft copolymers as DNA carriers. Biomaterials, 31(9), 2673–2685.
dc.relation.referencesen11. Wang, M., Liu, H., Li, L., & Cheng, Y. (2014). A fluorinated dendrimer achieves excellent gene transfection efficacy at extremely low nitrogen to phosphorus ratios. Nature communications, 5, 3053.
dc.relation.referencesen12. Liu, G., Fan, W., Li, L., Chu, P. K., Yeung, K. W., Wu, S., & Xu, Z. (2012). Novel anionic fluorine-containing amphiphilic self-assembly polymer micelles for potential application in protein drug carrier. Journal of Fluorine Chemistry, 141, 21–28.
dc.relation.referencesen13. Krafft, M. P., & Riess, J. G. (2009). Chemistry, physical chemistry, and uses of molecular fluorocarbon-hydrocarbon diblocks, triblocks, and related compounds unique "apolar" components for self-assembled colloid and interface engineering. Chemical reviews, 109(5), 1714–1792.
dc.relation.referencesen14. Ameduri, B., & Vitale, A. (2014). Fluorinated Oligomers and Polymers in Photopolymerization. Chemical Reviews, 115, XY.
dc.relation.referencesen15. Kinash, N. I., Paiuk, O. L., Dolynska, L. V., Nadashkevych, Z. Ya., & Hevus, O. I. (2017). Syntez novykh funktsionalnykh pokhidnykh kuminovoho spyrtu. Visnyk Nats. un-tu "Lvivska politekhnika". Serie: Khimiia, tekhnolohiia rechovyn ta yikh zastosuvannia, (868), 40–44.
dc.relation.referencesen16. Oliveira, M., Andrade, G., Guerra, M., & Bernardo, F. (2003). Development of a fluorescent in situ hybridization protocol for the rapid detection and enumeration of Listeria monocytogenes in milk. Revista Portuguesa de Ciências Veterinárias, 119–124.
dc.subjectрадикальна полімеризація
dc.subjectсіль церію
dc.subjectфторвмісні олігомери
dc.subjectфторалкільний спирт
dc.subjectагент передачі ланцюга
dc.subjectолігонуклеотид
dc.subjectradical polymerization
dc.subjectcerium salt
dc.subjectfluorine-containing oligomers
dc.subjectfluoroalkyl alcohol
dc.subjectchain transfer agent
dc.subjectoligonucleotide
dc.titleЛюмінесцентні олігонуклеотидвмісні блок-кополімери як маркери бактерій та клітин на основі телехелатного оліго (N-вінілпіролідону) з кінцевими епоксидним та фторалкільним фрагментами
dc.title.alternativeLuminescent oligonucleotide containing block-copolymers as markers of bacteria and cells basedon telechelatic poly (n-vinylpyrrolidone) with the terminal epoxy and fluoroalkyl fragment
dc.typeArticle

Files

Original bundle

Now showing 1 - 2 of 2
Thumbnail Image
Name:
2019v2n1_Volianiuk_K_A-Luminescent_oligonucleotide_166-172.pdf
Size:
951.43 KB
Format:
Adobe Portable Document Format
Thumbnail Image
Name:
2019v2n1_Volianiuk_K_A-Luminescent_oligonucleotide_166-172__COVER.png
Size:
476.25 KB
Format:
Portable Network Graphics

License bundle

Now showing 1 - 1 of 1
No Thumbnail Available
Name:
license.txt
Size:
3.1 KB
Format:
Plain Text
Description: